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伊势久生物 外切-β-1 4-葡聚糖酶 C1 检测试剂盒 分光光度法50T/24S 微量法100T/48S

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外切-β-14-葡聚糖酶(C1/纤维二糖苷酶活性测定试剂盒说明书

分光光度法 50/24

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义:

C1EC3.2.1.91存在于细菌、真菌和动物体内,是纤维素酶系的组份之一,C1催化多聚糖链的末端非还原端释放出纤维二糖和葡萄糖。

测定原理:

采用3,5-二硝基水杨酸法测定C1催化微晶纤维素降解产生的还原糖的含量。

组成:

产品名称

GMS048-50T/24S

Storage

提取液:液体

50ml

4℃

试剂一:液体

15ml

4℃

试剂二:液体

60ml

4℃

说明书

一份

自备仪器和用品:

可见分光光度计、水浴锅、离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

样品测定的准备:

1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(ml)为500~10001的比例(建议500万细菌或细胞加入1ml提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)15~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

3、血清(浆)样品:直接检测。

测定步骤:

1、分光光度计预热30min以上,调节波长至540nm,蒸馏水调零。

2、加样表(在EP管中依次加入下列试剂)

试剂名称(μl

测定管

对照管

样本

50

50

试剂一

500

蒸馏水

500

混匀,37℃准确水浴2h

试剂二

1000

1000

混匀, 90℃水浴10min(盖紧,防止水分散失),冷却后,540nm下吸光值A,计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需设一个对照管。

C1活性计算

1、标准条件下测定回归方程为y = 6.4078x - 0.0673x为标准品浓度(mg/ml),y为吸光值。

2、血清(浆)C1活力的计算

单位的定义:每ml血清(浆)每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。

C1活力(μg/min/ml)=[1000×(ΔA 0.0673) ÷6.4078×V反总]÷V÷T

=14.305×(ΔA 0.0673)

3细胞、细菌和组织中C1活力的计算

1)按照蛋白浓度计算

单位的定义:每mg组织蛋白每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。

C1活力(μg/min/mg prot)=[ [1000×(ΔA 0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(V×Cpr) ÷T

=14.305×(ΔA 0.0673) ÷Cpr

2)按样本鲜重计算

单位的定义:每g组织每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。

C1活力(μg/min /g鲜重)=[1000×(ΔA 0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(W× V÷V样总) ÷T

=14.305×(ΔA 0.0673) ÷W

3)按细菌或细胞密度计算

单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。

C1活力(μg/min /104cell)=[1000×(ΔA 0.0673) ÷6.4078×V反总]÷(500×V÷V样总) ÷T

=0.0286×(ΔA 0.0673)

10001mg/ml=1000ug/mlV反总:反应体系总体积,0.55mlV样:加入样本体积,0.05 mlV样总:加入提取液体积,1 mlT:反应时间,120 minCpr:样本蛋白质浓度,mg/mlW:样本质量,g500:细菌或细胞总数,500万。

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