山梨醇脱氢酶(sorbitol dehydrogenase,SH)试剂盒说明书
分光光度法 50管/48样
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
SH(EC1.1.1.14)催化山梨醇脱氢生成果糖,是调控生物体内山梨醇含量的关健酶之一。
测定原理:
SH催化山梨醇脱氢生成果糖,同时还原NAD 生成NADH,测定340nm吸光度增加速率可以计算SH活性。
组成:
产品名称 |
GMS020-50T/48S |
Storage |
提取液:液体 |
60ml |
4℃ |
试剂一:液体 |
20ml |
4℃ |
试剂二:粉剂 |
1瓶 |
4℃ |
试剂三:粉剂 |
1瓶 |
-20℃ |
说明书 |
一份 |
试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前每瓶加入15ml蒸馏水,用不完的试剂仍4℃保存。
试剂三:粉剂×1瓶,-20℃保存;临用前每瓶加入15ml蒸馏水,用不完的试剂仍-20℃保存。
自备仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1ml石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
粗酶液提取:
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(ml)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1ml提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
3、血清(浆)样品:直接检测。
测定步骤:
1、分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2、样本测定
试剂名称(μl) |
测定管 |
试剂一 |
400 |
试剂二 |
300 |
试剂三 |
300 |
混匀,37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)准确水浴5min
样本 |
50 |
将上述试剂按顺序加入1 ml玻璃比色皿中,加样本的同时开始计时,记录 20秒时的初始吸光度A1和2分20秒时的吸光度A2,计算ΔA=A2-A1。
SH活性计算:
1、血清(浆)SH活力的计算
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟生成1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
SH(nmol/min/ml)= [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷V样÷T=1688×ΔA
2、组织、细菌或细胞中SH活力的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟生成1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
SH(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=1688×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
SH(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=1688×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟生成1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
SH(nmol/min/104cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=3.376×ΔA
V反总:反应体系总体积,1.05×10-3L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.05 ml;V样总:加入提取液体积,1 ml;T:反应时间,2 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万。