总胆固醇(total cholesterol,TC)含量测定试剂盒说明书
微量法 100T/96S
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
TC包括游离胆固醇和胆固醇酯。TC是指组织中所有脂蛋白所含胆固醇之总和。
测定原理:
利用酯酶催化胆固醇酯水解生成游离胆固醇(FC)和游离脂肪酸(FFA),从而把胆固醇酯转化为FC;进一步利用胆固醇氧化酶催化FC氧化,生成△4-胆甾烯酮和H2O2;最后利用过氧化物酶催化H2O2氧化4-氨基安替比林和酚,生成红色醌类化合物;在500nm有特征吸收峰,其颜色深浅与TC含量成正比。
组成:
产品名称
|
FA022-100T/96S
|
Storage
|
试剂一:异丙醇(自备)
|
100ml
|
--
|
试剂二:液体
|
20ml
|
4℃
|
试剂三:粉剂
|
1瓶
|
4℃
|
试剂四:液体
|
40μl
|
4℃
|
TC标准品:液体
|
1ml
|
4℃
|
说明书
|
一份
|
TC标准品:液体1ml×1支,0.5μmol/ml,4℃保存。
自备仪器和用品:
水浴锅、可调式移液枪、酶标仪、96孔板。
TC的提取:
1、组织中TC的提取:按照组织质量(g):试剂一体积(ml)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml试剂一)进行冰浴匀浆,8000g 4℃离心10min,取上清,即TC待测液。
2、细胞、细菌中TC的提取:先收集400-500万细胞或细菌到离心管内,弃上清,加1ml试剂一,超声波破碎1min(强度20%,超声2s,停1s),即TC待测液。
3、血清(浆)等样品:直接测定。
测定操作:
1. /酶标仪预热30 min,调节波长到500 nm。
2. TC工作液的配制:临用前,吸取约0.8ml试剂二分别加入试剂三和试剂四瓶中,充分溶解后再全部转移回试剂二瓶中,充分混匀,TC工作液置于37℃水浴10min。用不完的工作液4℃保存一周。
3. 标准管:依次在96孔板中加入20μlFC标准液和180μlTC工作液,混匀,37℃静置3h后于500nm测定A标准管。
4. 测定管:依次在96孔板中加入20μlFC待测液和180μlTC工作液,混匀,37℃静置3h后于500nm测定A测定管。
5. 空白管:依次在96孔板中加入20μl试剂一和180μlTC工作液,混匀,37℃静置3h后于500nm测定A测定管。
注意:标准管和空白管只需测定一次。
计算公式:
1. 血清(浆)中TC含量计算:
TC(μ mol /dL)=C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)×100
=50×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)
C标准液:0.5μmol/ml;100 ml:1dL=100 ml。
2. 组织中TC含量计算:
(1)按样本蛋白浓度计算
TC(μ mol /mg prot)= C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷Cpr
= 0.5×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷Cpr
(2)按样本质量计算
TC(μ mol /g 鲜重)= C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷W
= 0.5×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷W
C标准液:0.5μmol/ml;样本蛋白浓度,mg/ml;W:样本质量,g/ml
3. 细胞、细菌中TC含量计算:
TC(μ mol /104cell)=C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷细菌或细胞(104cell /L)
=0.5×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)÷细菌或细胞(104cell /L)
C标准液:0.5μmol/ml。
最低检出限为1nmol/ml。