Masson 三色染色试剂盒
产品简介:
Masson三色染色一种最经典的结缔组织染色方法,同时也是一种显示组织中纤维的主要方法,是权威而经典的胶原纤维染色技术方法。这种实验方法染色与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关:以分子量体现分子的大小,相比之下,小分子量更容易穿透渗透性低、结构致密的组织;而大分子量则只能进入渗透性高、结构疏松的组织。由于苯胺蓝或淡绿的分子量都很大,因此Masson染色后肌纤维呈现出红色,胶原纤维呈现出蓝色(苯胺蓝)或绿色(淡绿),这个明显的颜色差别可用于区分肌纤维和胶原纤维。
BIOISCO Masson三色染色试剂盒具有染色稳定、分化时间仅需1~2 s、呈现清晰鲜艳的色彩、适用范围广泛,适宜于组织的冰冻切片和石蜡切片等染色、所染切片能够保存较长时间且不易褪色等特点。
组成:
产品名称 |
SCT001-50ml×5 25ml×2 |
SCT001-100ml×5 50ml×2 |
Storage |
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试剂(A) : |
A1: Weigert 染液 A |
25 ml |
50 ml |
RT 避光 |
A2: Weigert 染液 B |
25 ml |
50 ml |
RT |
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临用时,取 A1、A2 等量混合即为 Weigert 铁苏木素染液,不可预先配制,一般 24h 失去染色力。 |
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试剂(B): 酸性乙醇分化液 |
50 ml |
100 ml |
RT |
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试剂(C): 丽春红品红染色液 |
50 ml |
100 ml |
RT 避光 |
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试剂(D): 乙酸溶液 |
100 ml |
100 ml |
RT |
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试剂(E): 磷钼酸溶液 |
100 ml |
100 ml |
RT 避光 |
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试剂(F): 苯胺蓝染色液 |
100 ml |
100 ml |
RT 避光 |
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说明书 |
一份 |
储存条件:
12个月有效,一年有效。
自备材料:
1、选用甲醛升汞或甲醛盐溶液作为固定液。
2、95 %乙醇、无水乙醇等系列乙醇。
3、蒸馏水或去离子水。
操作步骤(仅供参考):
1、切片常规脱蜡至水。
2、利用准备好的试剂(A)染色5~10 min。
3、酸性乙醇分化液进行分化、水洗。
4、蒸馏水返蓝、水洗。
5、去离子水或蒸馏水洗1 min。
6、置于丽春红品红染色液染色5~10 min。
7、乙酸溶液清洗1 min。
8、磷钼酸溶液清洗1~2 min。
9、乙酸溶液清洗1 min。
10、直接使用苯胺蓝染色液染色1~2 min。
11、乙酸溶液清洗1 min。
12、使用95 %乙醇快速脱水。
13、无水乙醇(Ⅰ) 5~10 s。
14、无水乙醇(Ⅱ) 5~10 s。
15、无水乙醇(Ⅲ) 5~10 s。
16、二甲苯(Ⅰ) 1~2 min。
17、二甲苯(Ⅱ) 1~2 min。
18、二甲苯(Ⅲ) 1~2 min
19、最后使用中性树胶封固。
染色结果:
细胞核,胶原纤维/蛋白 |
胞浆、肌肉、红细胞 |
蓝色 |
红色 |
注意事项:
1、 尽量使用干净的切片脱蜡。
2、组织固定发挥着非常重要的作用,根据固定液的种类可适当延长或缩短染色时间。
3、 在经典masson三色染色中使用Harris苏木精染核,但Harris苏木精染核后切片颜色不够鲜艳,本试剂盒要求使用Weigert染细胞核,染色目的主要在于较好的区分肌纤维和胶原纤维,通常情况下也可以省略该染色步骤。
4、应依据切片厚薄、组织的类别和新旧设定试剂(B)-酸性乙醇分化液的分化时间。
5、 试剂(E)为乙酸溶液(0.2 %),可使色彩更清晰鲜艳,如果实际使用量较大可自行配制。
6、 要在镜下控制磷钼酸溶液分化,分化至胶原纤维呈现淡红色;纤维呈现红色即可。
分化时间一般为1~2 min,具体根据染色深浅而定。
7、 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
8、 使用场所应保持通风,并远离火源。