植物叶绿体中果糖1,6-二磷酸醛缩酶

（Fructose 1,6 bisphosphate aldolase，FDA）试剂盒说明书

紫外分光光度法

注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

产品内容：

    提取液一：液体50mL×1瓶，4℃保存。

提取液二：液体25mL×1瓶，4℃保存。

试剂一：液体25mL×1瓶，4℃避光保存。

试剂二：粉剂×1瓶，-20℃避光保存。临用前加5mL蒸馏水充分溶解。

试剂三：粉剂×1瓶，-20℃避光保存。临用前加5 mL蒸馏水充分溶解。

试剂四：粉剂×1瓶，-20℃避光保存。临用前加5 mL蒸馏水充分溶解。

试剂五：液体×1瓶，4℃避光保存。

产品说明：

植物叶绿体中果糖1,6-二磷酸醛缩酶是光合作用中参与calvin循环的重要酶。催化果糖1,6-二磷酸和景天庚酮糖1,7-二磷酸的合成反应，在各种逆境胁迫下表现不同的响应。

果糖1,6-二磷酸醛缩酶催化果糖1,6-二磷酸生成3-磷酸甘油醛和磷酸二羟丙酮，在磷酸丙糖异构酶和α-磷酸甘油脱氢酶作用下催化NADH和磷酸二羟丙酮生成NAD和α-磷酸甘油，340nm处吸光值的变化可反映果糖1,6-二磷酸醛缩酶活性的高低。

自备仪器和用品：

天平、低温离心机、震荡仪、研钵、紫外分光光度计、1 mL石英比色皿。

操作步骤:

一、酶液提取

按照植物组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5～10的比例（建议称取约0.1g，加入1mL提取液一）加入提取液一，冰浴匀浆后于4℃，1000g离心5min，取上清在4℃，4500g离心20min，去上清，取沉淀加0.5mL提取液二，置于震荡仪上震荡30s溶解，置冰上30min，重复操作一次（或者震荡溶解后超声，超声条件为功率200W，破碎3s，间歇7s，总时间1min），然后4℃，12000g离心10min，取上清待测。

二、测定操作

1. 分光光度计预热30min，调节波长至340nm，蒸馏水调零。

2. 取1mL石英比色皿，依次加入500μL试剂一，100μL试剂二，100μL试剂三，100μL试剂四，100μL粗酶液，充分混匀，记录340nm处10s的吸光值A1和310s的吸光值A2，△A=A2-A1

三、计算公式：

（1） 按照样本蛋白浓度计算

酶活单位定义：每毫克组织蛋白每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

FDA（nmol/min /mg prot）= ΔA÷（ε×d）×V反总÷(V样×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

（2）按照样本质量计算

酶活单位定义：每克组织每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

FDA（nmol/min /g）= ΔA÷（ε×d）×V反总÷(W ×V样÷V样总) ÷T= 321.54×ΔA÷W

（3）按照细胞数量计算

酶活单位定义：每104个细胞每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

FDA（nmol/min /104 cell）= ΔA÷（ε×d）×V反总÷(V样×细胞数量÷V样总) ÷T = 321.54×ΔA÷细胞数量

（4）按照液体体积计算

酶活单位定义：每毫升液体每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

FDA（nmol/min /mL）= ΔA÷（ε×d）×V反总÷V样÷T=321.54×ΔA

V反总：反应体系总体积，1mL；ε：NADH摩尔消光系数，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.1mL；V样总：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，5 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g

注意事项：

配置好的试剂二、试剂三、试剂四3天内使用完。